Ghép tế bào gốc là gì? Các công bố khoa học về Ghép tế bào gốc
Ghép tế bào gốc (hay còn được gọi là ghép tủy xương) là quá trình truyền tế bào gốc từ một nguồn đến một người khác để thay thế hoặc phục hồi chức năng của tủy ...
Ghép tế bào gốc (hay còn được gọi là ghép tủy xương) là quá trình truyền tế bào gốc từ một nguồn đến một người khác để thay thế hoặc phục hồi chức năng của tủy xương bị tổn thương hoặc không hoạt động đúng cách. Quá trình này thường được sử dụng trong điều trị một số bệnh hiếm, bệnh ung thư hệ máu, hoặc các bệnh liên quan đến hệ thống miễn dịch. Ghép tế bào gốc có thể được thực hiện từ tủy xương, máu tuỷ hoặc tủy đậu. Quá trình này tạo điều kiện cho tế bào gốc mới phát triển và tạo ra các tế bào mới, cải thiện chức năng miễn dịch và tái tạo các tế bào máu khỏe mạnh.
Ghép tế bào gốc (hematopoietic stem cell transplantation - HSCT) là một quá trình y tế phức tạp được sử dụng để điều trị nhiều loại bệnh khác nhau. Quá trình này bao gồm truyền tế bào gốc từ một người khác, gọi là người hiến tủy, đến người bệnh, gọi là người nhận tủy.
Có hai loại chính của ghép tế bào gốc: ghép tủy xương và ghép tủy tuỷ. Trong cả hai trường hợp, người hiến tủy hoặc người nhận tủy đều phải thông qua quá trình kiểm tra sức khỏe và trùng hợp tế bào gốc để đảm bảo rằng tế bào gốc hợp nhất với cơ thể người nhận và giảm nguy cơ phản ứng tương hợp.
Khi người hiến tủy xương, tế bào gốc được thu thập từ hốc xương, thường là xương chậu, bằng một xoàng, quá trình này được gọi là trích tâm tủy xương. Người hiến tủy sẽ phải tiến hành một quá trình phẫu thuật nhỏ dưới tê giác hoặc ghi tê để thu thập tủy xương.
Người nhận tủy cần phải được chuẩn bị trước đó bằng quá trình tiền xử lý, bao gồm việc sử dụng thuốc để tiêu diệt tế bào tủy của chính mình hoặc hóa trị liệu để xóa sạch tủy xương. Quá trình này được thực hiện để tạo không gian cho tế bào gốc mới có thể phát triển trong tủy xương một cách hiệu quả hơn.
Sau khi tế bào gốc đã được thu thập từ người hiến tủy, chúng được tiêm vào cơ thể người nhận thông qua ống tĩnh mạch. Tế bào gốc sẽ di chuyển vào tủy xương và bắt đầu tạo ra các tế bào mới. Quá trình này mất khoảng hai đến ba tuần cho tủy xương của người nhận để hồi phục hoàn toàn.
Ghép tế bào gốc có thể được sử dụng để điều trị nhiều loại bệnh, bao gồm bệnh ung thư hệ máu như bạch cầu bình thường, bạch cầu cấp tính và bạch cầu bất lưu, bệnh bạch huyết mãn tính và bệnh vỏ tủy mút, bệnh thức địa, một số bệnh autoimmun và rối loạn miễn dịch.
Danh sách công bố khoa học về chủ đề "ghép tế bào gốc":
Virus Epstein-Barr (EBV) gây ra lymphoma tế bào tủy vô hại có thể gây tử vong cho đến 25% trẻ em nhận ghép tủy xương từ những người hiến tặng không có liên quan hoặc không tương thích HLA. Bởi vì biến chứng này có vẻ phát sinh từ sự thiếu hụt tế bào T độc đặc hiệu với EBV, chúng tôi đã đánh giá sự an toàn và hiệu quả của các dòng tế bào T đa dòng (CD4+ và CD8+) lấy từ người hiến tặng như là một biện pháp phòng ngừa miễn dịch và điều trị cho lymphoma liên quan đến EBV. Chín mươi chín bệnh nhân được xem là có nguy cơ cao bị lymphoma do EBV đã nhận từ 2 đến 4 lần truyền tĩnh mạch tế bào lympho T đặc hiệu với EBV từ người hiến tặng, sau khi họ đã nhận tủy xương đã được tách tế bào T từ những người hiến tặng không tương thích HLA (n = 33) hoặc thành viên trong gia đình không tương thích (n = 6). Các hiệu ứng miễn dịch của liệu pháp này đã được theo dõi trong và sau các lần truyền. Các tế bào truyền vào được xác định qua việc phát hiện gen dấu hiệu neo. Tế bào T đặc hiệu với EBV mang dấu hiệu neo đã được xác định trong tất cả trừ 1 bệnh nhân. Phân tích DNA theo chuỗi đã phát hiện gen dấu hiệu trong thời gian dài tới 18 tuần trong các tế bào đơn nhân máu ngoại vi không bị can thiệp và kéo dài tới 38 tháng trong các dòng tế bào T độc đặc hiệu với EBV đã được tái tạo. Sáu bệnh nhân (15.5%) có lượng DNA-EBV tăng mạnh tại thời điểm vào học (>2,000 bản sao genome/106 tế bào đơn nhân), cho thấy sự nhân bản EBV không kiểm soát, một biến chứng có mối tương quan cao với sự phát triển sau này của bệnh lymphoma rõ ràng. Tất cả các bệnh nhân này đều có sự giảm 2 đến 4 log trong nồng độ DNA virus trong vòng 2 đến 3 tuần sau khi truyền và không ai phát triển lymphoma, xác nhận hoạt động kháng virus của tế bào từ người hiến tặng. Không có tác dụng độc hại nào có thể quy cho liệu pháp tế bào T phòng ngừa. Hai bệnh nhân khác không nhận liệu pháp phòng ngừa và phát triển lymphoma tế bào tủy rõ ràng đã phản ứng hoàn toàn với việc truyền tế bào T. Các dòng tế bào T đa dòng lấy từ người hiến tặng đặc hiệu với các protein của EBV có thể được sử dụng một cách an toàn để phòng ngừa lymphoma tế bào tủy do EBV sau khi ghép tủy xương đồng loại và cũng có thể hiệu quả trong điều trị bệnh đã thiết lập.
Chúng tôi đã chuyển giao các dòng tế bào T đặc hiệu với cytomegalovirus (CMV) từ người hiến tặng vào 8 bệnh nhân ghép tế bào gốc thiếu sự phát triển của tế bào T đặc hiệu với CMV. Tất cả các bệnh nhân, trong đó có một bệnh nhân nhiễm một chủng CMV có gen kháng ganciclovir, đã nhận hóa trị kháng virus không thành công trong hơn 4 tuần. Các dòng tế bào đặc hiệu với CMV đã được chuẩn bị bằng cách kích thích lặp đi lặp lại với kháng nguyên CMV, làm tăng tỷ lệ tế bào T đặc hiệu với CMV và hoàn toàn làm mất hoạt tính phản ứng allo ngay cả đối với những bệnh nhân không phù hợp về 1 đến 3 kháng nguyên HLA. Sau khi chuyển giao 107 tế bào T/m2 vào thời điểm trung bình 120 ngày (phạm vi, 79-479 ngày) sau khi ghép, không có tác dụng phụ nào được ghi nhận. Mặc dù đã ngừng hóa trị kháng virus, tải lượng CMV đã giảm đáng kể ở tất cả 7 bệnh nhân có thể đánh giá, với mức giảm tối đa sau thời gian trung bình 20 ngày (phạm vi, 5-31 ngày). Ở 2 bệnh nhân có tải lượng virus cao, tác dụng kháng virus chỉ duy trì tạm thời. Một trong hai bệnh nhân này đã nhận một lần truyền tế bào T thứ hai, hoàn toàn làm sạch virus. Sau thời gian trung bình 11 ngày sau khi chuyển giao, sự phát triển của tế bào T đặc hiệu với CMV đã được chứng minh ở 6 bệnh nhân, và sự gia tăng tế bào T CD4+ đặc hiệu với CMV đã được chứng minh ở 5 bệnh nhân. Ở 6 bệnh nhân, 1,12 đến 41 tế bào T CD8+ đặc hiệu với CMV/μL máu đã được phát hiện tại thời điểm trung bình 13 ngày sau khi chuyển giao, với sự gia tăng ở tất cả các bệnh nhân thiếu tế bào T CD8+ đặc hiệu với CMV trước khi chuyển giao. Do đó, liệu pháp tế bào chống CMV đã thành công ở 5 trong số 7 bệnh nhân, trong khi ở 2 trong số 7 bệnh nhân, những người nhận được liệu pháp ức chế miễn dịch tăng cường vào thời điểm hoặc sau liệu pháp tế bào T, chỉ đạt được sự giảm tải lượng virus tạm thời.
Các mạch vi cải thiện sự sống sót của các tế bào cơ tim nguồn gốc từ tế bào gốc đa năng cảm ứng (hiPSC), nâng cao quá trình tái cơ và chức năng tim sau cơn nhồi máu ở chuột.
Các tế bào miễn dịch đã được chứng minh là thể hiện các thụ thể cannabinoid và sản xuất các ligand nội sinh. Hơn nữa, việc kích hoạt các thụ thể cannabinoid trên các tế bào miễn dịch đã được chứng minh là kích hoạt sự ức chế miễn dịch mạnh mẽ. Mặc dù có những nghiên cứu như vậy, vai trò của cannabinoids trong cấy ghép, đặc biệt là để ngăn ngừa sự từ chối của ối ghép đồng loại, chưa, theo hiểu biết của chúng tôi, được điều tra trước đây. Trong nghiên cứu hiện tại, chúng tôi đã thử nghiệm tác động của THC lên sự ức chế HvGD cũng như sự từ chối của ối ghép da đồng loại. Để thực hiện điều này, chúng tôi đã nghiên cứu HvGD bằng cách tiêm tế bào lách H-2k vào chuột H-2b và phân tích phản ứng miễn dịch trong các hạch bạch huyết thoát lưu. Điều trị bằng THC đã giảm đáng kể sự phát triển và kích hoạt tế bào T trong các hạch bạch huyết thoát lưu của chuột nhận và giảm các cytokine chỉ dấu sự từ chối ở giai đoạn đầu, bao gồm IL-2 và IFN-γ. Điều trị bằng THC cũng gia tăng sự sống sót của ối ghép da đồng loại. Điều trị bằng THC ở chuột HvGD dẫn đến sự xuất hiện của các MDSC. Sử dụng các nghiên cứu làm sạch MDSC cũng như các thí nghiệm truyền tế bào, chúng tôi đã nhận thấy rằng MDSC được kích hoạt bởi THC là cần thiết cho việc giảm mạnh HvGD. Thêm vào đó, bằng cách sử dụng các chất ức chế dược lý của các thụ thể CB1 và CB2 cùng với các chuột knockout CB1 và CB2, chúng tôi đã thấy rằng THC hoạt động chủ yếu thông qua CB1. Tóm lại, nghiên cứu của chúng tôi cho thấy, lần đầu tiên theo hiểu biết của chúng tôi, rằng việc nhắm đến các thụ thể cannabinoid có thể cung cấp một phương pháp điều trị mới nhằm giảm HvGD và ngăn ngừa sự từ chối của ối ghép.
Các tế bào gốc tủy răng (DPSCs) có khả năng sinh sản cao và khả năng đa phân hóa, giữ được chức năng của chúng sau khi bảo quản đông lạnh. Trong nghiên cứu trước đây của chúng tôi, chúng tôi đã chứng minh rằng DPSCs chuột được bảo quản đông lạnh cải thiện bệnh đa dây thần kinh tiểu đường và hiệu quả của DPSCs chuột được bảo quản đông lạnh là tương đương với DPSCs chuột tươi được phân lập. Nghiên cứu hiện tại được tiến hành nhằm đánh giá xem việc cấy ghép DPSCs người được bảo quản đông lạnh (hDPSCs) có hiệu quả điều trị bệnh đa dây thần kinh tiểu đường hay không.
hDPSCs được phân lập từ các răng cấm của người bị ảnh hưởng đang được lấy ra vì lý do chính niềng răng. Tám tuần sau khi gây ra bệnh tiểu đường ở chuột nude, hDPSCs (1 × 105/chi) được cấy ghép một bên vào cơ chế cơ bắp của chi sau, và dung dịch điều kiện (dung dịch muối sinh lý) được tiêm vào bên đối diện như một kiểm soát. Các hiệu ứng của hDPSCs được phân tích sau 4 tuần cấy ghép.
Cấy ghép hDPSC đã cải thiện đáng kể các ngưỡng cảm giác giảm, tốc độ dẫn truyền thần kinh chậm và giảm lưu lượng máu đến thần kinh tọa ở chuột tiểu đường sau 4 tuần cấy ghép. Các tế bào hDPSCs đã được nuôi cấy đã tiết ra yếu tố tăng trưởng nội mạch (VEGF) và yếu tố tăng trưởng thần kinh (NGF). Một phần của các hDPSCs được cấy ghép được định vị xung quanh các bó cơ và biểu hiện gen VEGF và NGF ở vị trí cấy ghép. Tỷ lệ mao mạch/bó cơ đã được tăng đáng kể ở phía cấy ghép hDPSC của các cơ khoeo chuột tiểu đường. Các kháng thể trung hòa chống lại VEGF và NGF đã làm mất tác dụng của việc cấy ghép hDPSC lên tốc độ dẫn truyền thần kinh ở chuột tiểu đường, cho thấy rằng VEGF và NGF có thể đóng vai trò trong tác động của việc cấy ghép hDPSC lên bệnh đa dây thần kinh tiểu đường.
Quan hệ giữa chỉ số khối cơ thể và khả năng sống sót tổng thể đã gây tranh cãi ở những bệnh nhân mắc bệnh ác tính huyết học và trải qua quá trình ghép tế bào gốc huyết học.
Chúng tôi đã thu thập dữ liệu của 686 bệnh nhân mắc bệnh bạch cầu cấp chỉ nhận một lần ghép tế bào gốc huyết học đồng loại tại trung tâm của chúng tôi từ năm 2008 đến 2017. Bệnh nhân được chia thành bốn nhóm (thiếu cân, cân nặng bình thường, thừa cân và béo phì) dựa trên chỉ số khối cơ thể trước khi ghép tế bào gốc huyết học.
56.4% bệnh nhân có chỉ số khối cơ thể bình thường, 17.3% thiếu cân, 20.4% thừa cân và 5.8% bị béo phì. Đối với theo dõi dài hạn, khả năng sống sót tổng thể ở nhóm bệnh nhân thừa cân (P = 0.010) và bệnh nhân bị béo phì (P = 0.065) thấp hơn rõ rệt so với bệnh nhân có cân nặng bình thường, và không có sự khác biệt có ý nghĩa thống kê giữa các cá nhân thiếu cân và có cân nặng bình thường (P = 0.810). Kết quả cho thấy chỉ số khối cơ thể cao hơn liên quan đến khả năng sống sót tổng thể kém hơn (tỷ lệ nguy cơ: 1.79; khoảng tin cậy 95%: 1.33–2.40, P < 0.001) và thời gian sống sót không có bạch cầu (tỷ lệ nguy cơ: 1.78; khoảng tin cậy 95%: 1.35–2.34, P < 0.001). Thêm vào đó, những bệnh nhân có chỉ số khối cơ thể cao hơn có khả năng gặp vấn đề tái phát cao hơn (30.6 so với 20.9%, P < 0.001). Hơn nữa, tỷ lệ tử vong không liên quan đến tái phát ở bệnh nhân bị béo phì cao hơn có ý nghĩa thống kê so với bệnh nhân có cân nặng bình thường (22.5 so với 9.6%, P = 0.027). Ngoài ra, những cá nhân có vòng bụng lớn hơn có nguy cơ sống sót ngắn hơn (tỷ lệ nguy cơ: 1.73; khoảng tin cậy 95%: 1.29–2.31, P < 0.001) và tỷ lệ tái phát cao hơn (tỷ lệ nguy cơ: 1.78; khoảng tin cậy 95%: 1.29–2.45, P = 0.001) so với những người có vòng bụng nhỏ hơn.
Kết quả của chúng tôi chỉ ra rằng tình trạng béo phì ở giai đoạn trước khi ghép tế bào gốc huyết học, dù được xác định bởi chỉ số khối cơ thể cao hơn hay vòng bụng lớn hơn, có liên quan đến kết quả kém hơn.
Thiếu miễn dịch kết hợp nặng (SCID) là một nhóm các rối loạn thiếu miễn dịch nguyên phát (PID) tương đối hiếm, đặc trưng bởi sự phát triển rối loạn của tế bào T và tế bào B, do một số đột biến di truyền gây ra với những biểu hiện lâm sàng khác nhau. SCID có thể di truyền theo kiểu gen lặn thân thường hoặc kiểu gen liên kết X.
Một bệnh nhân nam 6 tuổi có tiền sử dị ứng thực phẩm, ho có đờm, viêm mũi mủ tái phát, tăng cân kém và suy giáp. Số lượng tổng CD4+ T lymphocyte, cùng với các phân nhóm tế bào nhớ trung tâm và tế bào T CD8+ nhớ trung tâm đều giảm khi kiểm tra bằng cytofluorometry. Một sự thay thế nucleotide ở exon một của gen thụ thể interleukin 2 gamma (IL-2RG) (c.115 G>A, p.D39N, ChrX: 70,331,275) đã được báo cáo, qua đó xác nhận chẩn đoán SCID liên kết X. Phòng ngừa bằng thuốc kháng virut và kháng sinh, cùng với IVIG (immunoglobulin tiêm tĩnh mạch) hàng tháng đã được bắt đầu và bệnh nhân đã được chuyển tiếp để ghép tế bào gốc tạo máu.
- 1
- 2
- 3
- 4
- 5
- 6
- 10